Receptores plaquetarios de la glucoproteína IIb/IIIa y trombastenia de Glanzmann

La agregación plaquetaria y la formación de fibrina son esenciales para el mantenimiento de la hemostasia normal, un sistema diseñado para actuar rápida y eficazmente para detener la hemorragia. Este sistema también se desencadena ante acontecimientos patógenos, como la rotura de una placa aterosclerótica, que puede provocar una oclusión vascular trombótica, isquemia e infarto. Las plaquetas contribuyen en gran medida a estos fenómenos trombóticos dañinos y potencialmente mortales debido a sus propiedades adhesivas, que dan lugar a la liberación de mediadores solubles, la agregación plaquetaria y el aumento de la generación de trombina.1 El receptor de la glucoproteína IIb/IIIa (GPIIb/IIIa) de las plaquetas es un componente clave en la vía de agregación plaquetaria; por consiguiente, este receptor se ha convertido en el objetivo de la intervención terapéutica. Un paradigma de esta modalidad de tratamiento antiplaquetario se encuentra naturalmente en el trastorno hereditario de la trombastenia de Glanzmann. Una característica clave de esta enfermedad es que los pacientes presentan hemorragias mucocutáneas, pero sólo en raras ocasiones demuestran una hemorragia espontánea del sistema nervioso central,2 una temida complicación del tratamiento anticoagulante y antiplaquetario. Todas las mutaciones que se han identificado en pacientes con trombastenia de Glanzmann dan lugar a una deficiencia funcional de los receptores GPIIb/IIIa,23 y una característica distintiva de esta enfermedad es la ausencia de agregación plaquetaria inducida por agonistas. La caracterización molecular de las mutaciones causantes de la trombastenia de Glanzmann ha proporcionado una gran cantidad de información sobre las relaciones estructura-función del receptor GPIIb/IIIa. Esta revisión resumirá brevemente las mutaciones que afectan a los dominios de unión al ligando y a la activación del receptor y las presentará en el contexto de las estructuras predichas. Se puede encontrar una cobertura más completa en las revisiones que discuten la estructura y la función del complejo del receptor GPIIb/IIIa45 y las bases clínicas y moleculares de la trombastenia de Glanzmann.23

Receptor GPIIb/IIIa

Las plaquetas son la primera línea de defensa en la prevención de la pérdida de sangre de los vasos sanguíneos lesionados mediante el reconocimiento y la adhesión a los componentes de la matriz subendotelial. A este acontecimiento le sigue la formación de un tapón plaquetario debido al reclutamiento de plaquetas adicionales mediante la unión y reticulación de grandes moléculas de ligando, como el fibrinógeno y el factor de von Willebrand. Además, las plaquetas activadas proporcionan una superficie para los componentes de la coagulación sanguínea, facilitando así la generación de trombina.67 La agregación plaquetaria está mediada por el receptor GPIIb/IIIa (integrina αIIbβ3), uno de los receptores más abundantes de la superficie celular (≈80 000 por plaqueta),8 que representa ≈15% de la proteína de superficie total.9 En las plaquetas quiescentes, este receptor presenta una afinidad de unión mínima por el factor von Willebrand y el fibrinógeno plasmático. En un estado activado, los mecanismos de transducción de señales «de dentro a fuera «5 desencadenan un cambio conformacional en el receptor hacia un estado de unión al ligando de alta afinidad que es competente para unir glicoproteínas adhesivas y formar un tapón plaquetario. Después de la unión del ligando, los mecanismos de transducción de señales «outside-in «5 median las interacciones entre la integrina y el citoesqueleto. Se ha demostrado que estos son requisitos para los eventos posteriores a la ocupación del ligando, como la propagación celular y la formación de sitios de adhesión focal.10

Los motivos de reconocimiento del ligando para los receptores de integrina requieren un aminoácido ácido para su actividad. El primer ejemplo de un péptido ácido que confiere reconocimiento a la integrina fue la secuencia Arg-Gly-Asp (RGD) en la fibronectina.11 Se descubrió que otras moléculas de la matriz extracelular contenían esta secuencia, y se adoptó el concepto de RGD como motivo de reconocimiento común.12 El motivo RGD se encuentra en los ligandos de los receptores GPIIb/IIIa, incluida la cadena α del fibrinógeno y el factor von Willebrand, pero un motivo de reconocimiento Lys/Gly-Asp (K/GD), que se encuentra dentro de una secuencia dodecapéptida única en la cadena γ del fibrinógeno, es necesario y suficiente para la agregación plaquetaria mediada por el fibrinógeno.13

Debido a la ausencia de una estructura cristalina, se dispone de información menos precisa sobre los sitios dentro de los receptores de integrina que reconocen ligandos. Se dispone de información estructural para 1 región de unión a ligandos, que es el dominio A o I (insertado) del factor von Willebrand.14 El dominio I se expresa en un subconjunto de subunidades de cadena α, y la cristalografía de alta resolución ha establecido este dominio como parte de un sitio de coordinación metálica único designado como sitio de adhesión dependiente de iones metálicos (MIDAS).14 El dominio I no está presente en la subunidad GPIIb (αIIb), pero los estudios estructurales han identificado una región de características de unión a cationes similares en las subunidades β de integrina.15 Se han generado varios modelos estructurales que muestran la asociación conformacional de los residuos de aminoácidos que se predice que desempeñan un papel directo en la unión del ligando.161718

Se ha predicho un modelo estructural del dominio de unión al ligando de una cadena de integrina α mediante modelado informático.19 La secuencia mínima de unión al ligando de la GPIIb está compuesta por los 450 aminoácidos aminoterminales, que contienen 7 repeticiones homólogas con 4 sitios de unión a cationes.20 Estas repeticiones se componen predominantemente de láminas β,21 que se ha predicho que se pliegan en una estructura de hélice β.19 La hélice β está muy conservada en la evolución, y el modelo para una cadena α de integrina contiene 7 repeticiones de láminas β que se disponen como palas de hélice alrededor de un eje central.19 Se ha propuesto que la unión del ligando tiene lugar en la cara opuesta a los sitios de unión a cationes que se encuentran en la parte inferior de esta estructura.19

Trombastenia de Glanzmann

La trombastenia de Glanzmann es una enfermedad autosómica recesiva que da lugar a una deficiencia funcional de los receptores GPIIb/IIIa.2 Este trastorno, que dura toda la vida, se caracteriza por la aparición de hemorragias mucocutáneas, siendo frecuentes la epistaxis y la púrpura en la infancia y la menorragia durante la edad fértil, causando una morbilidad significativa. El rasgo distintivo de esta enfermedad es la severa reducción o ausencia de agregación plaquetaria en respuesta a múltiples agonistas fisiológicos. Esta enfermedad está causada por mutaciones en los genes que codifican la GPIIb o la GPIIIa que dan lugar a anomalías cualitativas o cuantitativas de las proteínas de la membrana plaquetaria.23 La caracterización molecular de la trombastenia de Glanzmann en pacientes y sus familias ha permitido la detección de portadores basada en el ADN y la realización de diagnósticos prenatales.2223 En los últimos años, el número de mutaciones que se han identificado a nivel molecular ha aumentado,3 constituyendo así la base de una base de datos en Internet que incluye información clínica, bioquímica y de mutaciones de los pacientes reportados (http://med.mssm.edu/glanzmanndb).

Mutaciones dentro de la secuencia de la hélice β de una cadena de integrina α

Empiezan a surgir diferentes grupos de mutaciones de la trombastenia de Glanzmann que se localizan dentro de la hélice β de la GPIIb. Un grupo de mutaciones se localiza dentro y alrededor de los dominios de unión al calcio, y otro grupo se localiza dentro y alrededor de la tercera pala de la hélice (Figura 1). Se han identificado cuatro mutaciones de sentido erróneo y una mutación de deleción dentro del marco en 7 pacientes dentro y alrededor de los dominios de unión al calcio, que se encuentran dentro de las palas cuarta a séptima de la hélice. Estas mutaciones afectan al transporte del complejo GPIIb/IIIa a la superficie celular e incluyen una sustitución G273D(G242D) (paciente FLD),24 que precede al primer dominio de unión al calcio; sustituciones E355K(E324K) (pacientes FL y Swiss)2526 y R358H(R327H) (pacientes KJ y Mila-1)2728 , situadas entre el segundo y el tercer dominio de unión al calcio; una sustitución G449D(G418D) (paciente LM)29, que precede al cuarto dominio de unión al calcio; y una deleción V425D426 (paciente LeM)30 al principio del cuarto dominio de unión al calcio. Otro grupo de mutaciones se localiza en las proximidades de la tercera hoja (W3) de la hélice β, que contiene una estructura de giro β predicha que se ha implicado en la unión al ligando de la GPIIb/IIIa y otros receptores de integrina.3132 Cuatro mutaciones sin sentido en 5 pacientes dan lugar a receptores funcionalmente defectuosos. Una sustitución T207I(T176I) (Frankfurt I)33 se localiza en la hebra de conexión 1-2, una sustitución L214P(L183P) (paciente LW)34 se localiza en el extremo de la segunda hebra β cerca de la hebra de conexión 2-3, y las sustituciones P176A(P145A) (Mennonite)35 y P176L(P145L)35 se localizan dentro de la hebra de conexión 4-1 entre la segunda y la tercera hoja de la hélice. Una mutación D255V(D224V),36 situada en la cadena de conexión 4-1 entre la tercera y la cuarta pala de la hélice, ha demostrado la importancia funcional de esta región. Esta mutación se identificó a partir de receptores GPIIb/IIIa mutantes generados in vitro y expresados en la superficie de células de ovario de hámster chino37 e interrumpe la función de unión al ligando del receptor.

Mutaciones dentro del MIDAS de GPIIIa

Ocho mutaciones sin sentido identificadas en 9 pacientes con trombastenia de Glanzmann están localizadas dentro de la esfera de unión a cationes del dominio MIDAS de GPIIIa (Figura 2). Dos mutaciones, D145Y(D119Y) (variante Cam)38 y D145N(D119N) (paciente NR),39 están localizadas dentro del motivo aminoácido conservado DXSXS; 3 mutaciones, R240W(R214W) (variante Strasbourg I y paciente CM),4041 R240Q(R214Q) (paciente ET),42 y R242Q(R216Q) (paciente SH),43 están localizadas cerca de los sitios putativos de coordinación17 ; y 3 mutaciones, D143W(D117W) (paciente MK),44 S188L(S162L) (paciente BL),45 y L288P(L262P) (paciente LD),46 están localizadas dentro de la esfera del dominio MIDAS. Las mutaciones en el residuo D119 dan lugar a graves anomalías en la función de la GPIIb/IIIa, pero no afectan a la expresión en la superficie, mientras que la mutación en D117 da lugar a la retención intracelular de complejos de receptores mal plegados. Las mutaciones en los residuos R214 y R216 dan lugar a receptores GPIIb/IIIa expresados en superficie que son anormalmente sensibles a la disociación por quelación de calcio, y las mutaciones en los residuos S162 y L262 dan lugar a niveles de expresión en superficie ≈30% de lo normal pero también muestran sensibilidad a la disociación por calcio. La importancia de estos sitios se ve reforzada por la identificación de un grupo de receptores GPIIb/IIIa mutantes generados in vitro y expresados en células de ovario de hámster chino.37 Las mutaciones D119N, R214W, D217N, E220Q y E220K se identificaron como defectos funcionales, proporcionando un apoyo independiente a la importancia del dominio MIDAS en la unión del ligando.

Mutaciones que afectan a la activación del receptor

Se han identificado dos mutaciones de la trombastenia de Glanzmann que alteran el estado de activación del receptor GPIIb/IIIa. Ambas mutaciones están localizadas dentro del dominio citoplasmático de la GPIIIa, que es importante para la activación de la integrina y la regulación de la unión del ligando47. Las mutaciones son una mutación sin sentido R750X(R724X) (paciente RM),48 que da lugar a la supresión de los 39 residuos carboxi-terminales de la GPIIIa, y una mutación sin sentido S778P(S752P) (paciente P o París I).49 Las plaquetas en reposo de ambos pacientes expresan niveles significativos de complejos GPIIb/IIIa estables que no responden a los agonistas pero sí a los activadores conformacionales. Los análisis funcionales muestran una adhesión normal al fibrinógeno inmovilizado pero una propagación celular anormal. La mutación S778P(S752P) muestra una formación reducida de placas de adhesión focal, y la mutación R750X(R724X) muestra una fosforilación de tirosina indetectable de la cinasa de adhesión focal pp125FAK. Estas mutaciones apoyan el papel de la cola citoplasmática de la GPIIIa en la función del complejo de receptores GPIIb/IIIa.

Conclusión

Nuestra apreciación de la diversidad de anomalías que subyacen a la trombastenia de Glanzmann se ha visto enriquecida por la caracterización molecular de los defectos mutacionales identificados en pacientes afectados por este trastorno. Las mutaciones pueden definirse con precisión y ahora pueden identificarse distintos grupos de defectos mutacionales. La caracterización molecular de los pacientes con este trastorno ha proporcionado la base para la detección de portadores basada en el ADN y el diagnóstico prenatal de la trombastenia de Glanzmann. A medida que la base estructural de los receptores de integrinas comienza a desarrollarse, las mutaciones identificadas arrojarán luz sobre los mecanismos de formación de complejos receptor-ligando. La información generada a partir de estos estudios seguirá proporcionando información sobre la biogénesis, la estructura y la función de la familia de receptores de adhesión GPIIb/IIIa e integrinas.

Figura 1.

Figura 1. Trombastenia de Glanzmann y mutaciones generadas in vitro localizadas dentro de una estructura de hélice β de una subunidad de cadena α de integrina. Dibujo esquemático de una estructura de hélice β de 7 láminas que se predice que representa la región de unión al ligando de una subunidad de cadena α de integrina.19 Cada lámina (1 a 7) está compuesta por hebras β antiparalelas (flechas numeradas de 1 a 4, como se muestra en la lámina 1) que están conectadas por bucles de horquilla. Los 4 dominios de unión al calcio (líneas punteadas azules) están incluidos dentro de los 1-2 bucles de conexión dentro de las láminas 4 a 7. Se ha planteado la hipótesis de que estos dominios están situados en la parte inferior de la hélice y se encuentran frente a los sitios de unión del ligando.19 Las localizaciones de 8 mutaciones de sentido erróneo y 1 mutación de deleción identificadas en 12 pacientes con trombastenia de Glanzmann están representadas por círculos rojos; la mutación generada in vitro localizada entre la tercera y la cuarta pala de la hélice está representada por un círculo abierto en rojo.

Figura 2.

Figura 2. Mutaciones de la trombastenia de Glanzmann localizadas en las proximidades del dominio MIDAS de la GPIIIa (β3). Un dibujo esquemático muestra el patrón de plegado previsto de una estructura de dominio del factor A de von Willebrand de GPIIIa en la que un dominio MIDAS está situado en el centro de la estructura.17 Este dibujo se ha modificado para incluir las mutaciones identificadas en pacientes con trombastenia de Glanzmann. Las flechas de la A a la F representan las hojas β predichas, y los cilindros del 1 al 7 representan las estructuras de α-hélice predichas. El motivo de unión de cationes D119XS121XS123 y los residuos de coordinación D217 y E220 se muestran en círculos negros. Las localizaciones de 8 mutaciones identificadas en 9 pacientes con trombastenia de Glanzmann se representan con círculos rojos.

Notas al pie

Correspondencia a Deborah L. French, PhD, Box 1079 Hematology, Mount Sinai School of Medicine, One Gustave L. Levy Place, New York, NY 10029. Correo electrónico
  • 1 Coller BS. Aumento de la trombólisis con fármacos antiplaquetarios. Coron Artery Dis.1995; 6:911-914.MedlineGoogle Scholar
  • 2 George JN, Caen JP, Nurden AT. Trombastenia de Glanzmann: el espectro de la enfermedad clínica. Blood.1990; 75:1383-1395.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 3 French DL. La genética molecular de la trombastenia de Glanzmann. Platelets.1998; 9:5-20.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 4 Calvete JJ. Sobre la estructura y función de la integrina plaquetaria αIIbβ3, el receptor del fibrinógeno. Proc Soc Exp Biol Med.1995; 208:346-360.CrossrefMedlineGoogle Scholar5 Shattil SJ, Kashiwagi H, Pampori N. Integrin signaling: the platelet paradigm. Blood.1998; 91:2645-2657.MedlineGoogle Scholar

  • 6 Reverter JC, Beguin S, Kessels H, Kumar R, Hemker HC, Coller BS. Inhibición de la generación de trombina mediada por las plaquetas e inducida por el factor tisular mediante el anticuerpo quimérico 7E3 de ratón/humano. J Clin Invest.1996; 98:863-874.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 7 Oliver JA, Monroe DM, Roberts HR, Hoffman M. Thrombin activates factor XI on activated platelets in the absence of factor XII. Arterioscler Thromb Vasc Biol.1999; 19:170-171.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 8 Wagner CL, Mascelli MA, Neblock DS, Weisman HF, Coller BS, Jordan RE. Análisis del número de receptores GPIIb/IIIa mediante la cuantificación de la unión del 7E3 a las plaquetas humanas. Blood.1996; 88:907-914.MedlineGoogle Scholar
  • 9 Jennings LK, Phillips DR. Purificación de las glicoproteínas IIb y IIIa de las membranas plasmáticas de las plaquetas humanas y caracterización de un complejo de glicoproteína IIb-III dependiente del calcio. J Biol Chem.1982; 257:10458-10466.MedlineGoogle Scholar
  • 10 Yamada KM, Geiger B. Molecular interactions in cell adhesion complexes. Curr Biol.1997; 9:76-85.CrossrefGoogle Scholar
  • 11 Ruoslahti E, Pierschbacher MD. Arg-Gly-Asp: una señal de reconocimiento celular versátil. Cell.1986; 44:517-518.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 12 Yamada KM. Secuencias de reconocimiento de adhesión. J Biol Chem.1991; 266:12809-12812.MedlineGoogle Scholar
  • 13 Farrell DH, Thiagarajan P, Chung DW, Davie EW. Role of fibrinogen α and γ chain sites in platelet aggregation. Proc Natl Acad Sci U S A.1992; 89:10729-10732.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 14 Lee J-O, Rieu P, Arnaout MA, Liddington R. Crystal structure of the A domain from the α subunit of integrin CR3 (CD11b/CD18). Cell.1995; 80:631-638.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 15 Michishita M, Videm V, Arnaout M. Un nuevo sitio de unión de cationes divalentes en el dominio A de la integrina β2 CR3 (CD11b/CD18) es esencial para la unión del ligando. Cell.1993; 72:857-867.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 16 Tozer EC, Liddington RC, Sutcliffe MJ, Smeeton AH, Loftus JC. La unión del ligando a la integrina αIIbβ3 depende de un dominio similar a MIDAS en la subunidad β3. J Biol Chem.1996; 271:21978-21984.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 17 Tuckwell DS, Humphries MJ. A structure prediction for the ligand-binding region of the integrin β subunit: evidence for the presence of a von Willebrand factor A domain. FEBS Lett.1997; 400:297-303.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 18 Takagi J, Kamata T, Meredith J, Puzon-McLaughlin W, Takada Y. Changing ligand specificities of αvβ1 and αvβ3 integrins by swapping a short diverse sequence of the β subunit. J Biol Chem.1997; 272:19794-19800.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 19 Springer TA. Folding of the N-terminal, ligand-binding region of integrin α-subunits into a β-propeller domain. Proc Natl Acad Sci U S A.1997; 94:65-72.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 20 Loftus JC, Halloran CE, Ginsberg MH, Feigen LP, Zablocki JA, Smith JW. El tercio aminoterminal de αIIb define la especificidad de reconocimiento de ligando de la integrina αIIbβ3. J Biol Chem.1996; 271:2033-2039.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 21 Tuckwell DS, Humphries MJ, Brass A. A secondary structure model of the integrin α subunit N-terminal domain based on analysis of multiple alignments. Cell Adhes Commun.1994; 2:385-402.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 22 Seligsohn U, Mibashan RS, Rodeck CH, Nicolaides KH, Millar DS, Coller BS. Diagnóstico prenatal de la trombastenia de Glanzmann. Lancet..1985; 2:1419. Letter.MedlineGoogle Scholar
  • 23 French DL, Coller BS, Usher S, Berkowitz R, Eng C, Seligsohn U, Peretz H. Prenatal diagnosis of Glanzmann thrombasthenia using the polymorphic markers BRCA1 and THRA1 on chromosome 17. Br J Haematol.1998; 102:582-587.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 24 Poncz M, Rifat S, Coller BS, Newman PJ, Shattil SJ, Parrella T, Fortina P, Bennett JS. Trombastenia de Glanzmann secundaria a una mutación Gly273Asp adyacente al primer dominio de unión al calcio de la glicoproteína IIb de las plaquetas. J Clin Invest.1994; 93:172-179.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 25 Bourre R, Peyruchaud O, Bray P, Combrie R, Nurden P, Nurden AT. Una mutación puntual en el gen de la GPIIb plaquetaria conduce a una sustitución en un aminoácido altamente conservado situado entre el segundo y el tercer dominio de unión al Ca++. Blood..1995; 86:452a. Resumen.Google Scholar
  • 26 Ruan J, Peyruchaud O, Alberio L, Valles G, Clemetson K, Bourre F, Nurden AT. Doble heterocigosidad del gen GPIIb en un paciente suizo con trombastenia de Glanzmann. Br J Haematol.1998; 102:918-925.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 27 Wilcox DA, Paddock CM, Lyman S, Gill JC, Newman PJ. Trombastenia de Glanzmann resultante de una única sustitución de aminoácidos entre el segundo y el tercer dominio de unión al calcio de la GPIIb. J Clin Invest.1995; 95:1553-1560.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 28 Ferrer M, Fernández-Pinel M, González-Manchón C, González J, Ayuso MS, Parrilla R. Una GPIIb mutante (Arg327His) asociada a la trombastenia ejerce un efecto negativo dominante en células CHO transfectadas de forma estable. Thromb Haemost.1996; 76:292-301.MedlineGoogle Scholar
  • 29 Wilcox DA, Wautier JL, Pidard D, Newman PJ. Una única sustitución de aminoácidos que flanquea el cuarto dominio de unión al calcio de αIIb impide la maduración del complejo de integrina αIIbβ3. J Biol Chem.1994; 269:4450-4457.MedlineGoogle Scholar
  • 30 Basani RB, Vilaire G, Shattil SJ, Kolodziej MA, Bennett JS, Poncz M. Trombastenia de Glanzmann debida a una deleción de dos aminoácidos en el cuarto dominio de unión al calcio de αIIb: demostración de la importancia de los dominios de unión al calcio en la conformación de αIIbβ3. Blood.1996; 88:167-173.MedlineGoogle Scholar
  • 31 Irie A, Kamata T, Puzon-McLaughlin W, Takada Y. Los residuos de aminoácidos críticos para la unión del ligando están agrupados en un giro β predicho de la tercera repetición N-terminal en las subunidades α4 y α5 de la integrina. EMBO J.1995; 14:5550-5556.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 32 Kamata T, Irie A, Tokuhira M, Takada Y. Residuos críticos de la subunidad αIIb de la integrina para la unión de αIIbβ3 (glicoproteína IIb-IIIa) al fibrinógeno y a los anticuerpos miméticos del ligando (PAC-1, OP-G2 y LJ-CP3). J Biol Chem.1996; 271:18610-18615.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 33 Westrup D, Santoso S, Becker-Hagendorff K, Just M, Jablonka B, Siefried E, Kirchmaier CM. Transfección de GPIIbIle176/IIIa (Frankfurt I) en células de mamífero. Thromb Haemost..1997; 77:671. Abstract.Google Scholar
  • 34 Grimaldi CM, Chen FP, Wu CH, Weiss HJ, Coller BS, French DL. La mutación de la glicoproteína IIb Leu214Pro produce trombastenia de Glanzmann con anomalías cuantitativas y cualitativas en la GPIIb/IIIa. Blood.1998; 91:1562-1571.MedlineGoogle Scholar
  • 35 Basani RB, French DL, Vilaire G, Brown DL, Chen F, Coller BS, Derrick JM, Gartner TK, Bennett JS, Poncz M. A natural occurring mutation near the amino terminus of αIIb defines a new region involved in ligand binding to αIIbβ3. Blood..2000; 95:180-188.MedlineGoogle Scholar
  • 36 Tozer EC, Baker E, Ginsberg MH, Loftus JC. Una mutación en la subunidad α de la integrina plaquetaria αIIbβ3 identifica una nueva región importante para la unión del ligando. Blood.1999; 93:918-924.MedlineGoogle Scholar
  • 37 Baker EK, Tozer EC, Pfaff M, Shattil SJ, Loftus JC, Ginsberg MH. Un análisis genético de la función de las integrinas: Trombastenia de Glanzmann in vitro. Proc Natl Acad Sci U S A.1997; 94:1973-1978.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 38 Loftus JC, O’Toole TE, Plow EF, Glass A, Frelinger AL III, Ginsberg MH. Una mutación de la integrina β3 suprime la unión del ligando y altera la conformación dependiente del catión divalente. Science.1990; 249:915-918.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 39 Ward CM, Chao YL, Kato GJ, Casella J, Bray PF, Newman PJ. La sustitución de Asn, pero no de Tyr, por Asp119 de la subunidad de integrina β3 preserva la unión a la fibrina y la retracción del coágulo. Blood..1997; 90:26a. Resumen.Google Scholar
  • 40 Lanza F, Stierle A, Fournier D, Morales M, Andre G, Nurden AT, Cazenave J-P. Una nueva variante de la trombastenia de Glanzmann (Estrasburgo I: plaquetas con complejos de glucoproteína IIb-IIIa funcionalmente defectuosos y una mutación de la glucoproteína IIIa Arg214Trp. J Clin Invest.1992; 89:1995-2004.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 41 Djaffer I, Rosa J-P. Un segundo caso de variante de la trombastenia de Glanzmann debido a la sustitución de la GPIIIa plaquetaria (integrina β3) Arg214 por Trp. Hum Mol Genet.1993; 2:2179-2180.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 42 Bajt ML, Ginsberg MH, Frelinger AL III, Berndt MC, Loftus JC. Una mutación espontánea de la integrina αIIbβ3 (glicoproteína plaquetaria IIb-IIIa) ayuda a definir un sitio de unión al ligando. J Biol Chem.1992; 267:3789-3794.MedlineGoogle Scholar
  • 43 Newman PJ, Weyerbusch-Bottum S, Visentin GP, Gidwitz S, White GCI. Trombastenia de Glanzmann de tipo II debida a una sustitución de aminoácidos desestabilizadora en la glicoproteína IIIa de la membrana de las plaquetas. Thromb Haemost..1993; 69:1017. Abstract.Google Scholar
  • 44 Basani RB, Brown DL, Vilaire G, Bennett JS, Poncz M. Una mutación Leu117Trp dentro de la región de reticulación del péptido RGD de β3 da lugar a la trombastenia de Glanzmann al impedir la exportación de αIIbβ3 a la superficie de las plaquetas. Blood.1997; 90:3082-3088.MedlineGoogle Scholar
  • 45 Jackson DE, White MM, Jennings LK, Newman PJ. Una mutación Ser162Leu dentro de la glicoproteína (GP) IIIa (integrina β3) da lugar a un complejo αIIbβ3 inestable que conserva una función parcial en una nueva forma de trombastenia de Glanzmann de tipo II. Thromb Haemost.1998; 80:42-48.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 46 Ward CM, Newman PJ. Una mutación Leu262Pro en la subunidad β3 de la integrina da lugar a un complejo αIIbβ3 que se une a la fibrina pero no al fibrinógeno. Blood..1997; 90:25a. Resumen.Google Scholar
  • 47 Shattil SJ, Gao J, Kashiwagi H. No sólo otra cara bonita: regulación de la función plaquetaria en la cara citoplasmática de la integrina αIIbβ3. Thromb Haemost.1997; 78:220-225.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 48 Wang R, Shattil SJ, Ambruso DR, Newman PJ. El truncamiento del dominio citoplásmico de β3 en una forma variante de trombastenia de Glanzmann anula la señalización a través del complejo de la integrina αIIbβ3. J Clin Invest.1997; 100:2393-2403.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 49 Chen Y-P, Djaffar I, Pidard D, Steiner B, Cieutat A-M, Caen JP, Rosa J-P. Mutación Ser752Pro en el dominio citoplásmico de la subunidad β3 de la integrina y activación defectuosa de la integrina αIIbβ3 de las plaquetas (glicoproteína IIb-IIIa) en una variante de la trombastenia de Glanzmann. Proc Natl Acad Sci U S A.1992; 89:10169-10173.CrossrefMedlineGoogle Scholar

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